KPC耐药菌显色培养基
kpc耐药菌显色培养基基础
hicrome kpc agar base
货号
品名
规格
价格
m1831
hicrome kpc agar base
kpc耐药菌显色培养基基础
100g，500g
询价
fd279
hicrome kpc agar supplement
kpc耐药菌显色培养基添加剂
5vl
询价
原理
kpc显色琼脂是用于检测和鉴别产kpc的革兰氏阴性菌。碳青霉烯类抗生素是用于治疗由革兰氏阴性耐药菌导致致命感染的后一道防线（2）。碳青霉烯酶的产生导致对*、*（如头孢吡肟、*）、碳青霉烯类（如*，*）和*的耐药，从而产生多发性耐药。
这些碳青霉烯酶产生菌主要是肠杆菌科成员，并且被命名为抗碳青霉烯的肠杆菌（cre）。除了肠杆菌科，还有极少数铜绿假单胞菌菌株和鲍曼不动杆菌菌株℃也产生碳青霉烯酶（1、2、3）。
添加剂使培养基具有选择性，能抑制不产生碳青霉烯酶的酵母、革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌。
该培养基是作为一种初筛培养基，依据clsi指南，分离的菌落应进一步作碳青霉烯类药敏试验。吲哚试验可用于证实抗碳青霉烯的大肠埃希菌，因为有时存在少数弗氏柠檬酸杆菌菌株产生与大肠埃希菌近似的粉色至洋红色菌落。克雷伯氏菌、肠杆菌和沙雷氏菌作为碳青霉烯耐药菌产生蓝绿色菌落。不动杆菌和沙门氏菌产生平滑的无色菌落。假单胞菌产生无色至淡黄绿色、边缘褶皱的有光泽菌落。必要时可做进一步的生化鉴定。
培养基成分
组分
g/l
蛋白胨
15.000
显色混合剂
3.000
琼脂
15.000
配制
16.50g溶于500ml蒸馏水，加热至沸腾使*溶解。高压灭菌。冷却至45-50℃。无菌加入1管添加剂（fd279），混匀并倾注平板。注：肺炎克雷伯菌（baa1705）为kpc阳性菌的标准菌株，pcr检测证实，并对碳青霉烯抗生素耐药。
培养反应
菌株（atcc）
接种量
生长
回收率
菌落
粪肠球菌（29212）
≥103
抑制
0%
——
肺炎克雷伯菌（baa1705）
50-100
旺盛
≥50%
蓝绿色
肺炎克雷伯菌（13883）
≥103
抑制
0%
——
白色念珠菌（10231）
≥103
抑制
0%
——
*（25923）
≥103
抑制
0%
——
参考文献
1. hindiyeth, m., et al. j.clin.microbiol. 2008(46): 2879-2883
2. pillai d.r. et al. emerg.infect.dis. 2009(15):827-829
3. samra.z., j.clin.microbiol; 2008(146):3110-3111
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规格
价格
m1831
hicrome kpc agar base
kpc耐药菌显色培养基基础
100g，500g
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fd279
hicrome kpc agar supplement
kpc耐药菌显色培养基添加剂
5vl
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原理
kpc显色琼脂是用于检测和鉴别产kpc的革兰氏阴性菌。碳青霉烯类抗生素是用于治疗由革兰氏阴性耐药菌导致致命感染的后一道防线（2）。碳青霉烯酶的产生导致对*、*（如头孢吡肟、*）、碳青霉烯类（如*，*）和*的耐药，从而产生多发性耐药。
这些碳青霉烯酶产生菌主要是肠杆菌科成员，并且被命名为抗碳青霉烯的肠杆菌（cre）。除了肠杆菌科，还有极少数铜绿假单胞菌菌株和鲍曼不动杆菌菌株℃也产生碳青霉烯酶（1、2、3）。
添加剂使培养基具有选择性，能抑制不产生碳青霉烯酶的酵母、革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌。
该培养基是作为一种初筛培养基，依据clsi指南，分离的菌落应进一步作碳青霉烯类药敏试验。吲哚试验可用于证实抗碳青霉烯的大肠埃希菌，因为有时存在少数弗氏柠檬酸杆菌菌株产生与大肠埃希菌近似的粉色至洋红色菌落。克雷伯氏菌、肠杆菌和沙雷氏菌作为碳青霉烯耐药菌产生蓝绿色菌落。不动杆菌和沙门氏菌产生平滑的无色菌落。假单胞菌产生无色至淡黄绿色、边缘褶皱的有光泽菌落。必要时可做进一步的生化鉴定。
培养基成分
组分
g/l
蛋白胨
15.000
显色混合剂
3.000
琼脂
15.000
配制
16.50g溶于500ml蒸馏水，加热至沸腾使*溶解。高压灭菌。冷却至45-50℃。无菌加入1管添加剂（fd279），混匀并倾注平板。注：肺炎克雷伯菌（baa1705）为kpc阳性菌的标准菌株，pcr检测证实，并对碳青霉烯抗生素耐药。
培养反应
菌株（atcc）
接种量
生长
回收率
菌落
粪肠球菌（29212）
≥103
抑制
0%
——
肺炎克雷伯菌（baa1705）
50-100
旺盛
≥50%
蓝绿色
肺炎克雷伯菌（13883）
≥103
抑制
0%
——
白色念珠菌（10231）
≥103
抑制
0%
——
*（25923）
≥103
抑制
0%
——
参考文献
1. hindiyeth, m., et al. j.clin.microbiol. 2008(46): 2879-2883
2. pillai d.r. et al. emerg.infect.dis. 2009(15):827-829
3. samra.z., j.clin.microbiol; 2008(146):3110-3111
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