昆虫细胞的保存培养实验
1. 将 3 ml 含 10% 胎牛血清的昆虫细胞培养基 tnm-fh 加入到一个 60 mm 组织培养皿或 25 cm2培养瓶中。
2. 取出一支冻存 sf 9 细胞的安瓿,迅速置于 37℃ 水浴,用手前后摇动融化。当安瓿的内容物几乎融化时,将安瓿浸入 70% 乙醇,消毒外壁。
3. 打碎安瓿颈部,将内容物转移至步骤 1 的 60 组织培养皿或 25 cm2培养瓶。用手轻轻摇动,使细胞分散均匀,置 27℃ 温育 2~3 h 直到细胞贴壁。
4. 除去旧培养液,换 3 ml 新鲜培养液 tnm-fh/10%fbs,继续温育。每 3 天换液一次(除去旧培养液换新鲜的),直到细胞生长汇片(形成拥挤的单层培养物)。
5. 当 sf 9 细胞已生长汇片时,弃去培养瓶中的培养液。加入新鲜的培养液,用移 液管轻柔吹打重悬细胞。
6. 用为培养组织细胞设计的血细胞计数器计数细胞。在血细胞计数器小方格上的每一个细胞相当于 104细胞/ml。
7. 在一个新的 60 mm 组织培养皿或 25 cm2培养瓶中接种来自步骤 5 的(1~2)× 106个细胞,摇动培养瓶使细胞均匀分布(如果制备大量培养细胞,可用大的培养瓶,装入更多的培养液)。加入新鲜培养液 tnm-fh/ 10% fbs 至终体积 3 ml。
8. 27℃ 温育,每 3 天用 tnm-fh/10% fbs 培养基换液,直到培养瓶中的细胞生长汇片。
9. 弃去汇片的单层培养细胞中的培养液,并重悬细胞(同步骤 5),用血细胞计数器计数细胞。
10. 以(4~5)× 105细胞/ml 的密度将细胞接种于一个旋转培养瓶中,27℃ 温育,以 60~80 r/min 的速度恒速搅拌。轻微开启旁边的通气孔,以保证充足的空气。
11. 每隔 2 或 3 天进行细胞计数(见附录 3f)。当细胞密度达到(2~2.5)× 105/ml 时 进行传代,将适量细胞移至一个含有新鲜培养液 tnm-fh/10% fbs 的新培养瓶中,使终密度达到(4~5)× 105/ml。
12. 在 1 ml 对数生长的细胞中加入 0.1 ml 的 0.4% 台盼蓝,测定细胞活力。在低倍显 微镜下检查细胞,计数被台盼蓝染色的细胞(死细胞)和总细胞数,计算出死细胞和活细胞的百分比例。
13. 将单层培养细胞(从步骤 5)或悬浮培养细胞(从步骤 11)传代至由 1 份tnm-fh/10%fbs 培养液和 1 份无血清培养液(bacu 10 gold,sf-900 ii 或 excell 401)组成的混合培养液中。让细胞长至汇片(单层培养),或达到(2~3)× 106细胞/ml 的密度(悬浮培养)。
14. 按步骤 13 的方法重复,将细胞传代至 tnm-fh/10%fbs 培养液与无血清培养液比例为 1 : 3 的混合培养液中,使细胞生长。
15. 按步骤 13 的方法,用培养液与无血清培养液比例为 1: 7 至 1 : 9 的混合培养液,重复细胞传代与细胞生长的步骤。
16. 用无血清培养液传代细胞。
17. 计数呈对数生长的待冻存细胞(见附录 3f)。
18. 室温以 1000 g(gh-3.7 转子为 2000r/min)离心 10 min, 弃去上清液。
19. 用 tnm-fh/10% fbs 培养液以(1~2)× 107细胞/ml 的密度重悬细胞团块。加入等体积含 20% dmso 的 tnm-fh/10% fbs 培养液,将细胞置于冰浴。吸出 1 ml 细胞悬液,移入带螺口盖的冻存管中,置于 -20℃ 1 h,然后 -70℃ 过夜。
20. 将冻结的细胞移至液氮罐中以便长期保存。
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